点击蓝字关注我们
内源电场(EEF)在细胞信号传导、神经再生和伤口愈合等多种生理过程中起着关键作用,调控机体内的EEF有助于维持健康。正常表皮的跨上皮电位是伤口EEF的基础。由于上皮细胞中离子通道的不对称分布,阳离子(Na+)和阴离子(Cl−)分别被输送至表皮的基底侧和顶侧,形成跨上皮电位。受伤时,电流从伤口处流出,产生横向EEF,伤口边缘作为阳极,中心作为阴极。电场可引导细胞迁移并调节细胞增殖和黏附。然而,伤口中减弱的EEF阻碍了细胞的迁移和增殖,提供适当的电场有助于加速伤口愈合。然而,外部电刺激的复杂性和设备的笨重性阻碍了电疗的临床转化和日常使用。因此,迫切需要开发具有EEF重塑和修复功能的医疗修复材料,以快速促进组织再生和伤口愈合,克服现有敷料仅侧重于保护伤口和抑制感染而忽略伤口内部EEF或环境调节的问题。具有绿色自供能电刺激功能的新型伤口敷料为这一挑战提供了有前景的解决方案。
图1示意了热电装置的制备过程及其作为自供能可穿戴敷料在抗菌、抗炎和重塑EEF方面的应用,用于治疗耐药细菌感染的伤口。首先,在紫外光下将丙烯酰胺(AM)、2-丙烯酰胺基-2-甲基-1-丙磺酸钠(AMPS-Na)及不同浓度(0、1、2 或 4 mg mL−1)的单宁酸(TA)聚合,制备出热电水凝胶PAATn(n = 0、1、2、4)。进一步地,以碳布和碳化无纺布作为集电体制备了PAAT₂,构建出一种用于自供能可穿戴敷料的热电装置PTED₂。该敷料能够利用感染伤口与外界环境之间的温差产生热电电位。
图1. TA负载的热电水凝胶器件(PTEDn)示意图。
热电电位的产生是由于在温度梯度下离子的定向迁移,这一现象被称为Soret效应或热泳。当水凝胶中存在温差时,内部的离子在驱动力作用下从高温区迁移到低温区。这种离子的定向运动主要由热扩散和热力学熵效应驱动。敷料应用于感染伤口后,能够重塑伤口的EEF,促进细胞增殖和迁移,杀灭细菌,抑制炎症反应,加速伤口愈合。
热电水凝胶的制备与表征
图2a展示了PAATn(n = 0、1、2、4)中离子和分子链的示意图,其化学结构通过傅里叶变换红外光谱进行研究。随着水凝胶中TA含量的增加,在769 cm−1处出现并增强了苯环C-H弯曲振动的特征峰。此外,采用扫描电子显微镜(SEM)表征了PAATn的微观结构。水凝胶中丰富的交联微孔有助于水的吸收和运输。加入TA后,由于大量氢键的形成诱导了致密的交联网络,水凝胶的微结构尺寸减小。当水凝胶中TA含量达到4 mg mL−1时,尽管孔径减少(< 20 µm),但仍存在连续孔隙。增加的TA分子可能作为新的交联点,形成致密的交联水凝胶网络。此外,PAAT₂具有粘附性能,有助于促进伤口闭合。
图2. a)水凝胶中离子和分子链的示意图。b) PAAT₂ (甲基橙染色)以不同角度粘附在弯曲的手指关节上以及粘附在c) 扭曲、折叠的猪皮上的照片和从手指上剥离的照片。d) 180°剥离试验,用于测量PAATn与猪皮的界面韧性。PAATn与皮肤之间的剥离粘附能随着TA浓度的增加而增大。e) 猪皮和PAATn之间的搭接剪切强度试验。结果表明,水凝胶对皮肤组织的粘附力随着水凝胶中TA含量的增多而增大。f) PAAT₂在30%和80%RH环境中的失水率。g) PAAT₂在25-37°C下的储能模量G′和损耗模量G′′。h) 拉伸应力-应变曲线和i) PAATn的杨氏模量。
将PAAT₂贴在指关节或猪皮上时,由于TA、Poly-AMPS−和皮肤组织之间形成氢键,在指关节弯曲或猪皮折叠时能够粘附在组织表面(图2b, c)。此外,当从手指上剥离水凝胶时,其粘附性不足以损伤组织。随后将PAATn压缩并粘附在猪皮表皮上,以量化其粘附能。随着TA浓度的增加,PAATn的粘附能增加,这可能是由于TA的负载在皮肤组织中诱导了更多氢键。PAAT₀、PAAT₁、PAAT₂和PAAT₄的剥离粘附能分别为767、872、1106和1732 J m−2(图2d)。此外,图2e结果显示,PAAT₀、PAAT₁、PAAT₂和PAAT₄的搭接拉伸强度分别为3、5、11和28 kPa。这些结果证实了水凝胶粘附于组织和皮肤的能力。
热电性能评估
PAATn是一种可将热能转化为电能的热电水凝胶,被用于构建热电装置。图3a显示了基于阳离子和阴离子在温度差(ΔT)作用下不同热扩散效应的热电装置的层状结构,可用作自供电的可穿戴敷料。热电优值(ZT)反映了热电材料的效率,其由塞贝克系数(S)、离子电导率(σ)和热导率(κ)决定。对合成水凝胶的热电参数(S、σ和κ)进行了研究。图3b中的电化学阻抗谱数据用于计算σ。在25 °C下,随着TA含量的增加,PAATn的σ从11.3 mS cm−1降低至6.1 mS cm−1。此外,利用温度控制装置和电压计测量合成水凝胶的S(图3c)。PAAT₀、PAAT₁、PAAT₂和PAAT₄水凝胶的S值分别为11.31、12.74、12.15和10.46 mV K−1。此外,PAATn的κ通过热扩散系数、比热容和密度(图3d)计算得出,分别为0.13、0.10、0.16和0.30 W m−1 K−1。如图3e所示,得出了合成水凝胶的ZT,其中PAAT2的ZT为2.01。
图3. a) 自供电可穿戴敷料的分层结构,以及存在温差(ΔT=12 K,模拟体温与外部环境之间的温差)的情况下,基于阴离子和阳离子的热扩散效应的热电产生机制。b) 奈奎斯特散点图,c) 塞贝克系数和d)PAATn的热导率。e) 通过S、σ和κ计算PAATn的ZT值。f) PTEDn的热电势变化曲线,对应ΔT=12 K。g) PTEDn的实时电流密度变化。h) PTEDn的功率密度图。i) ΔT=12 K时PAAT2的实时红外图像。
观察到的PAATn的塞贝克系数、ZT值及其他参数的变化可归因于氢键形成与TA在水凝胶中迁移的协同效应。TA的加入增加了PAATn中的氢键数量,通常会导致热性能的降低。相反,TA本身的迁移可以增强热性能。最初,随着TA含量的增加,TA的迁移是影响热性能的主要因素。然而,随着TA含量的进一步增加,氢键的形成变得更为显著,并最终主导整体效应。这种变化导致了塞贝克系数、ZT值及其他相关参数的降低。
体外抗菌和抗氧化活性评估
受到TA优异抗菌活性的启发,使用耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(MRSA)和大肠杆菌(*E. coli*)作为细菌模型来评估PAATn的抗菌活性。如图3a所示,随着水凝胶中TA含量的增加,其抗菌性能提升,因为杀菌活性源于TA。PAAT₂抑制了MRSA的增殖,仅≈4%的MRSA仍然存活。PAAT₄几乎能够100%杀死MRSA菌株。对于PAAT₀,其抗菌性能(细菌存活率:61%)可能归因于PAAT₀的吸附作用和AMPS-Na的碱性。对*E. coli*的实验中观察到类似的杀菌活性,细菌存活率在与PAAT₀、PAAT₁、PAAT₂和PAAT₄共培养后,分别从100%降至63%、18%、11%和2.8%(图4b)。此外,抑菌圈测试显示,随着水凝胶中TA含量的增加,抑菌圈直径逐渐增大,证明了释放的TA在水凝胶中起到了重要的抗菌作用。值得注意的是,对*E. coli*和MRSA的杀菌效果差异可能归因于不同细菌种类细胞壁成分和结构的差异。
图4. 经PAATn处理后的a) MRSA和b) E. coli细菌存活率。c) 不同处理后MRSA和E. coli的活/死荧光染色图像(比例尺:20 μm)。d) PAATn释放TA消除细胞内ROS的示意图。e) 在37°C下,TA通过碳化无纺布从PAATn中释放到PBS缓冲液(pH=7.4)中的释放曲线。f) 通过TMB法测试PAATn的OH•消除效率。不同处理后的溶液照片(插图)。g) PAATn对DPPH•的清除率。h) DCFH-DA检测ROS的荧光曲线。i) DCFH-DA染色的不同处理后的L929细胞的荧光图像。比例尺:100 μm。注:*p<0.05、**p<0.01和***p<0.001。
体外生物相容性和抗炎效果
PAATn的生物相容性是影响其体内实际应用的关键因素,通过溶血和细胞毒性实验进行评估。如图5a所示,PAAT₀和PAAT₁水凝胶的溶血率约为0%,接近阴性对照组。PAAT₂和PAAT₄的溶血率分别为2.38%和3.41%,仍低于安全临界溶血率(5%),表明所制备的水凝胶不会对红细胞造成显著损害。此外,通过CCK-8法评估水凝胶对哺乳动物细胞的细胞毒性,选用L929细胞作为模型细胞。图5b显示,经过PAAT₀、PAAT₁、PAAT₂和PAAT₄处理后的L929细胞存活率分别为94.35%、86.69%、86.89%和80.57%,表明所合成的水凝胶未引起显著的细胞毒性。
图5. a) 用PAATn孵育4 h后红细胞的溶血活性。用PBS和Triton X-100溶液处理的红细胞分别用作阴性对照和阳性对照。b) 用PAATn处理24 h后L929细胞的存活率。PBS处理的L929细胞用作阴性对照。c) 对L929细胞施加不同的电场条件下细胞迁移的图像。d) 不同处理后用SYTO 9和DAPI染色的L929细胞24 h增殖的图像。使用Elisa试剂盒测量释放的促炎细胞因子e) IL-6和f) IL-1β。分别使用经LPS处理和未经LPS处理的细胞作为阳性对照和阴性对照。注:*p<0.05、**p<0.01和***p<0.001。
创面体内治疗效果
基于热电器件开发的敷料能够克服传统动力敷料的缺点,如需要外部电源或触发因素、稳定性差、疗效单一等。利用外部环境和创面之间的自然温差产生热电势,并结合抗菌和抗氧化能力,开发的热电敷料有望成为创面电刺激治疗的新型敷料。考虑到PAAT₂优异的体外抗菌活性、抗氧化活性和良好的生物相容性,以及PTED₂持续稳定的电压供应性能,选择PTED₂作为热电敷料对MRSA感染的创面进行体内治疗效果评价(图6a)。如图6b所示,PTED₂重塑创面的电场并释放TA,加速了创面愈合。在应用于创面后,监测了皮肤上水凝胶的温差(图6c),温度随接触时间而变化。将直径为6 mm的MRSA感染全层创面接种107 CFU mL−1的细菌悬液20分钟后,进行不同处理。未感染细菌且覆盖纱布的小鼠作为阴性对照组。正对照组和PAAT₀组在2天后观察到创面有严重的炎症反应和明显的化脓现象(图6d,e)。由于感染严重,这些创面在8天后仍存在明显的疤痕和结痂,残余创面面积分别为原创面的54.22%和56.25%。在阴性对照组中,未观察到感染,创面在前2天愈合较慢,随后愈合加速,8天后创面面积为18.43%,表明愈合良好。PTED₀处理组在创面初期存在一定的炎症反应,但随着电场的重塑和修复,创面愈合情况优于正对照组和PAAT₀组。对于PTED₂处理的感染创面,由于释放的TA的抗菌和抗炎活性及创面电场的重塑和修复,2天后未见明显的炎症和细菌感染。PTED₂组创面逐渐愈合,8天后残余创面面积为13.65%,显著小于其他组,表明PTED₂具有卓越的促进创面愈合作用。
图6. a) PTEDn在MRSA感染伤口中的应用示意图。b) PTED2的图片以及EEF重塑和TA释放的机制示意图。c) 伤口上PTED2的热成像图。d) 跟踪伤口闭合10天的代表性图像(比例尺:6 mm),以及e) 伤口愈合过程中伤口区域的尺寸变化图。f) 小鼠伤口部位的热电势监测,并应用g) PTED0和h) PTED2(不同颜色的点表示平行伤口的测试数据)。i) 实时监测PTED2产生的热电势。j) 不同处理后第2天从小鼠伤口组织分离的细菌菌落统计。仅用纱布覆盖的未感染伤口作为阴性对照组,用纱布治疗的MRSA感染小鼠用作阳性对照组。
为了进一步评估创面愈合过程,对治疗后第2天和第11天的组织切片进行了H&E染色分析。如图7a、b所示,在正对照组、PAAT₀组和PTED₀组中观察到更多的炎症细胞,表明存在显著的炎症反应;而在阴性对照组和PTED₂处理组中观察到的炎症细胞明显减少,尤其是PTED₂处理组,表明PTED₂具有更强的抗炎能力。在第2天和第11天,PTED₂处理组的炎症细胞数量显著减少,且表皮和真皮组织完整,组织结构相对均匀,显示出促进创面愈合的有效性。
此外,通过评估胶原沉积、促炎细胞因子释放、血管生成和表皮形成来分析PTED₂对创面愈合过程的影响。胶原沉积在创面愈合过程中起重要作用,通过Masson三色染色进行研究。染色后,胶原呈现蓝色,而肌纤维呈现红色。如图7a、c所示,在PAAT0组、PTED0组和正对照组中观察到类似的胶原沉积。然而,在PTED₂处理组中,第2天和第11天观察到明显的胶原形成和沉积,提示PTED₂促进了胶原沉积。在创面组织的IL-6和IL-1β染色中,炎症细胞呈红色染色。与其他组相比,PTED₂处理组的红色荧光较少,提示炎症较轻,这与H&E染色的炎症反应趋势一致。
图7. a) 不同处理后第2天的伤口组织的苏木精-伊红(H&E)染色、Masson染色、IL-6、IL-1β和CD-31免疫染色以及CK-13染色图片。b) 根据小鼠的H&E图像对炎性细胞进行统计分析。c) 通过Masson染色测定的胶原沉积和d) 来自小鼠CD-31图像微血管密度。
该研究展示了一种通过消除伤口耐药细菌感染、抗炎和修复内源性电场损失的治疗细菌感染伤口的综合疗法。该可穿戴自供电敷料兼具抗菌、抗氧化和产电的功能,有望成为动物和人类创面感染治疗策略的候选材料,在相关生物医学领域具有广阔的应用前景。
原文链接
https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1002/adfm.202415085
相关进展
苏州大学严锋教授团队 AM:基于硼酸酯动态交联的聚离子液体水下粘合剂
苏州大学严锋教授 JACS:具有生物相容性可逆粘附离子凝胶
苏州大学严锋教授等 Chem. Rev.:(聚)离子液体合成、性能与应用
苏州大学严锋教授团队 Nat. Mater.: 纳米限域聚合限制无滞后凝胶裂纹扩展
苏州大学严锋教授团队《AM》:会呼吸、能排汗、可抑菌的聚离子液体柔性电子皮肤
苏州大学严锋教授与南京大学王晓亮教授合作Angew :受结冰启发的基于有机离子晶体的高强度可逆胶粘剂
苏州大学严锋团队《AM》:轻重皆宜,冷热不惧—电场诱导的梯度离子凝胶,用于仿生离子手指
苏州大学严锋教授课题组:基于聚离子液体水凝胶的抗冻离子皮肤
扫二维码|关注我们
微信号 : Chem-MSE
欢迎专家学者提供化学化工、材料科学与工程及生物医学工程等产学研方面的稿件至chem@chemshow.cn,并请注明详细联系信息。化学与材料科学会及时选用推送。










